小鼠成瘤检测

检测项目

肿瘤体积动态监测：采用游标卡尺测量瘤体三维直径，计算体积公式V=0.5×L×W²，每日记录生长曲线，精度±0.1mm

瘤体质量测定：处死后精密电子天平称量新鲜瘤组织，量程0.1mg-300g，记录绝对质量与体重占比

转移灶定量分析：解剖肺肝脑等器官，计数肉眼可见转移结节，显微测量微转移灶直径＞0.5mm

组织病理学评估：石蜡切片HE染色，按WHO标准进行肿瘤分化程度分级（G1-G4）

血管密度检测：CD31免疫组化染色，微血管计数＞200倍视野，单位面积血管数定量

细胞增殖指数：Ki-67抗体标记，计算阳性细胞占比，检测阈值≥5%判定阳性

凋亡率检测：TUNEL法测定凋亡细胞密度，每标本计数≥1000个细胞

药物渗透浓度：LC-MS/MS测定瘤内药物浓度，检出限0.1ng/g组织

免疫浸润分析：流式细胞术检测CD4+/CD8+T细胞比例，采样细胞数≥1×10⁶

基因表达谱：qPCR检测20种肿瘤相关基因表达量，内参基因ΔCt值校正

肿瘤干细胞比例：CD44+/CD133+双标流式分选，设门纯度＞95%

代谢显像监测：小动物PET/CT追踪¹⁸F-FDG摄取率，SUVmax值量化

检测范围

人源肿瘤异种移植模型：涵盖肺癌PDX、乳腺癌PDX等，保持原发肿瘤分子特性

细胞系移植瘤模型：包括HepG2肝癌、A549肺癌等常用细胞系皮下荷瘤

转基因自发瘤模型：如KPC胰腺癌模型、TRAMP前列腺癌模型等

原位移植模型：乳腺癌 mammary fat pad接种、肝癌肝内注射等

转移模型构建：尾静脉注射构建肺转移，脾内注射构建肝转移

免疫缺陷动物模型：采用NOD/SCID、NSG小鼠进行人源细胞移植

人源化免疫系统模型：PBMC或CD34+细胞重建免疫微环境

耐药性模型：连续传代建立紫杉醇/顺铂耐药株

放射敏感性模型：局部X射线照射联合瘤体积监测

肿瘤休眠模型：低接种量建立潜伏期＞60天的微瘤灶

血管生成模型：Matrigel栓内皮细胞迁移实验

循环肿瘤细胞检测：外周血CTC富集鉴定EpCAM+细胞

检测标准

实验动物福利遵循AAALAC认证准则及GB/T 35892-2018实验动物福利要求

瘤体积测量执行ISO 20928:2019小动物肿瘤模型测量规范

组织处理符合GB/T 37868-2019实验动物组织样本制备通则

免疫组化染色参照FDA ICH Q2(R1)验证指南

流式细胞术执行ISAC标准化方案

病理诊断采纳WHO Classification of Tumours第5版标准

药物疗效评价遵循RECIST 1.1实体瘤疗效标准

微生物监测依据GB 14922.2实验动物微生物等级检测

动物模型构建参照NCI PDXNet技术规范

数据记录遵循GLP 21 CFR Part 58规范

统计学分析采用GB/T 3358.1-2009统计学术语

检测仪器

小动物活体成像系统：配备冷CCD相机，检测灵敏度5×10³细胞，动态监测生物发光信号

显微CT扫描仪：空间分辨率5μm，三维重建瘤体微结构

激光共聚焦显微镜：405/488/561/640nm四激光通道，Z轴分辨率0.5μm

高通量流式细胞仪：16色检测通道，每秒分选30000个细胞

组织切片数字化扫描仪：40倍物镜扫描，分辨率0.25μm/pixel

小动物呼吸麻醉机：异氟烷浓度控制精度±0.1%，维持血氧饱和度＞95%

显微操作注射系统：三维液压推进，最小注射体积50nL

超微量核酸蛋白分析仪：检测范围0.02-1000ng/μL

实时无标记细胞分析仪：动态监测细胞增殖/凋亡，时间分辨率1分钟

冷冻组织研磨仪：低温破碎组织，保持RNA完整性RIN＞8.0

检测优势

1. 确保安全：通过检测可以确保防爆用呆扳手的安全性，防止在使用过程中引发火灾或爆炸。

2. 提高质量：通过检测可以提高防爆用呆扳手的产品质量，增强其市场竞争力。

3. 延长使用寿命：通过检测可以发现呆扳手的潜在问题，及时进行维修和更换，延长其使用寿命。

4. 降低维护成本：通过定期检测可以及时发现呆扳手的问题，避免因故障导致的停机和维修成本。

5. 提高工作效率：通过检测可以确保呆扳手的正常使用，提高工作效率，减少因工具故障导致的生产损失。

　　以上是关于小鼠成瘤检测相关的简单介绍，具体试验/检测周期、方法和步骤以与工程师沟通为准。北检研究院将持续跟进新的技术和标准，工程师会根据不同产品类型的特点，选取相应的检测项目和方法，以最大程度满足客户的需求和市场的要求。